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플라스미드 DNA와 PCR 생산물을 전기영동을 통해 확인하는 실험
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Ⅰ. 기본정보

Ⅱ. 서론 (Introduction)

1. PCR (polymerase chain reaction)
1-1. PCR의 원리
1-2. PCR의 과정

1-3. PCR의 주재료

2. PCR 결과 확인 (전기영동, electropH oresis)
3. 전기영동의 종류
3-1. 이동 계면 전기영동법 (Moving boundary electrophoresis)
3-2. 띠 전기영동법 (Zone electrophoresis)
3-3. 불연속 젤 전기영동법 (Disc-gel electrophoresis)

3-4. SDS젤 전기영동법

3-5. 아가로오스 젤 전기영동법 (Agarose gel electrophoresis)

Ⅲ. 실험재료 및 방법 (Materials & Methods)
1. 실험재료(Materials)
2. 실험 방법(Methods)
Ⅳ. 실험결과 및 결론 (Data and Results)
Ⅴ. 고찰 (Discssion)
1. 제 1 타입은 세포 전체 DNA(total cell DNA)이며 클로닝될 유전자를 얻기 위해 필요.
1-1. Total cell DNA의 분리
2. 제 2 타입은 순수한 플라스미드 DNA이며 분리방법은 기본적으로 total cell DNA분리와 같지만 어느 단계에서는 염색체 DNA와 분리되어야 한다.
2-1. 플라스미드 DNA의 분리
3. 제 3 타입은 파지 DNA이 며 파지 클로닝 벡터로 이용될 때 필요.
3-1. 박테리어파지 DNA의 분리
※ 아가로스 젤 전기영동장치의 원리
※ Agarose gel 전기영동시 DNA의 이동에 영향을 주는 요인들
▶ 아가로즈(아가로스, Agarose)

Ⅵ. 참고 문헌 (Reforence)

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Ⅱ. 서론 (Introduction)
1. PCR (polymerase chain reaction)
PCR(polymerase chain reaction)은 1983년, K.B.Mullis가 고안한 것으로 특정염기서열을 증폭함으로써 DNA 염기서열 분석 및 현대 분사생물학의 발전을 가져왔다. PCR 방법에 가장 흔히 사용되는 DNA 중합효소(DNA polymerase)는 Taq 1 polymerase이다. 초기에는 E. coli polymerase를 사용하였으나 열에 불안정하여 각 cycle이 진행될 때 마다 효소를 첨가해주어야 하는 불편함이 있었다. 그래서 개발된 것이 75℃ 온천에서 분리한 세균 고도호열균(Thermus aquaticus)에서 얻은 DNA polymerase이다. Taq 1 polymerase는 75℃에서 최적으로 DNA를 합성하고 94℃에서도 안전성을 갖기 때문에 각 cycle 마다 효소를 첨가할 필요 없이 특정염기서열을 증폭할 수 있다.
1-1. PCR의 원리
PCR은 DNA의 원하는 부분을 증폭하는 방법이다. DNA 분자의 어느 부분이든지 경계배열(border sequence 〓 프라이머 염기서열)만 알면 PCR을 통해서 증폭할 수 있다. PCR은 DNA의 변성(denaturation), 프라이머의 결합(annealing), DNA의 신장(extension) 세 단계로 구성되어 있고, 이 과정을 반복하면서 DNA가 증폭된다. 기본적으로 PCR에 필요한 요소들에는 주형 DNA(DNA template), 프라이머(primer), 뉴클레오티드(dNTP), 중합효소(polymerase) 등이 있으며, PCR의 정확성을 결정하는데 가장 중요한 것은 프라이머와 온도이다.
캠벨 생명과학 포커스 2판, Lisa A. Urry 외 4명, ㈜바이오사이언스출판, 2019
핵심 일반생물학 실험서, 오병운 외 5명, ㈜바이오사이언스출판, 2018
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